qPCR實驗操作與數(shù)據(jù)分析指南

　　qPCR實驗操作與數(shù)據(jù)分析指南
 

　　一、實驗操作流程
 

　　樣品準(zhǔn)備‌
 

　　RNA提取‌：使用Trizol法裂解樣本，加入異丙醇沉淀RNA，75%洗滌后溶解于無酶水中。
 

　　反轉(zhuǎn)錄‌：將RNA與逆轉(zhuǎn)錄酶混合，37℃孵育15分鐘，85℃滅活5秒。
 

　　qPCR體系配制‌
 

　　預(yù)混液配置‌：將SYBRGreen染料、引物和無酶水按比例混合，避免反復(fù)凍融‌。
 

　　加樣技巧‌：每樣本設(shè)3個重復(fù)孔，使用預(yù)混液減少誤差，槍頭需更換以防交叉污染。
 

　　上機(jī)運(yùn)行‌
 

　　離心除氣泡‌：上機(jī)前短暫離心，輕彈管壁消除氣泡。
 

　　程序設(shè)置‌：采用三步法(變性、退火、延伸)，熔解曲線驗證引物特異性。
 

　　二、數(shù)據(jù)分析方法
 

　　數(shù)據(jù)預(yù)處理‌
 

　　Ct值計算‌：記錄熒光信號達(dá)到閾值的循環(huán)數(shù)，內(nèi)參基因(如GAPDH)用于標(biāo)準(zhǔn)化。
 

　　△Ct值‌：目的基因Ct值減去內(nèi)參基因Ct值，消除樣本間差異。
 

　　相對定量計算‌
 

　　法‌：實驗組△Ct值減去對照組△Ct值，計算相對表達(dá)量‌。
 

　　示例公式‌：若實驗組△Ct為4.43，對照組為3.21，則表達(dá)量為2^(4.43-3.21)=2^1.22≈2.28倍。
 

　　結(jié)果可視化‌
 

　　圖表繪制‌：使用GraphPadPrism繪制柱狀圖，橫坐標(biāo)為樣本組別，縱坐標(biāo)為相對表達(dá)量‌。
 

　　三、常見問題與優(yōu)化
 

　　引物設(shè)計‌：擴(kuò)增子長度建議80-200bp，避免二聚體形成‌。
 

　　陰性對照‌：用水替代模板，若出現(xiàn)擴(kuò)增信號需檢查引物特異性‌。
 

　　重復(fù)性差‌：預(yù)混液分裝后加樣，減少操作誤差。
 

　　提示‌：實驗前需驗證引物擴(kuò)增效率，數(shù)據(jù)需包含至少3個重復(fù)孔以提高可靠性‌。
 

　　注：以上僅供參考，不作為實際數(shù)據(jù)，實驗需嚴(yán)格遵循說明或咨詢技術(shù)老師。Elisa試劑盒
 

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